Negli esperimenti di biologia molecolare e di biologia cellulare, l'estrazione ad alta purezza delle proteine nucleari è un passaggio fondamentale nello studio dei processi nucleari come la regolazione genica, l'attività dei fattori di trascrizione e la struttura della cromatina. A causa della differenza di distribuzione tra proteine nucleari e proteine citoplasmatiche, per garantire l'accuratezza dei dati sperimentali, è necessario un metodo di estrazione delle proteine nucleari con bassa contaminazione incrociata e facile da usare per ottenere campioni di proteine nucleari ad alta purezza. Inoltre, le proteine nucleari sono sensibili all'ambiente esterno e si dovrebbe prestare particolare attenzione alle condizioni operative durante il processo di estrazione, come il controllo della temperatura e l'uso di inibitori della proteasi, per mantenere l'attività proteica ed evitare la degradazione.
È particolarmente importante scegliere il metodo di estrazione delle proteine nucleari appropriato per diverse esigenze sperimentali. Ad esempio, per proteine altamente espresse nel nucleo come HIF1-α e TWIST, si consiglia di utilizzare un kit di estrazione delle proteine nucleari o un tampone di lisi delle proteine nucleari dedicato per l'estrazione. Questi metodi non solo ottimizzano le fasi operative, ma riducono anche efficacemente la contaminazione incrociata tra citoplasma e proteine nucleari, fornendo una base di campione affidabile per esperimenti successivi (come Western Blot, immunoprecipitazione, ecc.).
Ecco due metodi di estrazione delle proteine nucleari relativamente facili da usare:
Per le proteine con elevata espressione nel nucleo, come HIF1-α e TWIST, per l'estrazione si dovrebbe usare uno speciale kit di estrazione delle proteine nucleari o un tampone di lisi delle proteine nucleari.
Fasi di estrazione delle proteine nucleari (metodo di macinazione per omogeneizzazione)
Preparazione
Prima dell'esperimento di estrazione delle proteine nucleari, è necessario preparare in anticipo i reagenti e i tamponi pertinenti per garantire che il processo sperimentale proceda senza intoppi. Di seguito sono riportate la formula dettagliata e l'uso della soluzione colorante blu di tripano e del tampone:
Formula della soluzione colorante blu di tripano
Preparazione della soluzione madre: pesare una quantità appropriata di polvere di blu di tripano e scioglierla in 10 mL di acqua bidistillata per preparare una soluzione madre di blu di tripano al 4% (p/v).
Diluizione della soluzione di lavoro: utilizzare il tampone PBS per diluire la soluzione madre 10 volte per ottenere una soluzione di lavoro con concentrazione dello 0,4%.
Uso: mescolare la soluzione di lavoro blu di tripano allo 0,4% e la sospensione cellulare a un volume di 1:1 per il conteggio delle cellule o il rilevamento dell'attività cellulare. Formula del tampone A (tampone di lisi cellulare)
Ingredienti:
10 mM HEPES (pH 7,9, 4°C)
1,5 mM MgCl₂
10 mM KCl
0,5 mM DTT (ditiotreitolo)
Se è necessario impedire che la degradazione delle proteine plasmatiche influenzi le proteine nucleari, è possibile aggiungere 1 mM PMSF (fenilmetilsulfonil fluoruro)
Funzione:
Utilizzato per la lisi della membrana cellulare, il rilascio dei nuclei cellulari e per garantire l'integrità del nucleo cellulare. Formula del tampone B (tampone di estrazione delle proteine nucleari)
Ingredienti:
20 mM HEPES (pH 7,9)
25% (v/v) glicerolo
0,42 M NaCl
1,5 mM MgCl₂
0,2 mM EDTA (acido etilendiamminotetraacetico)
0,5 mM PMSF
0,5 mM DTT
Funzione:
Rottura della membrana nucleare e rilascio delle proteine nucleari mantenendo la stabilità e l'attività delle proteine.
Fasi di estrazione delle proteine nucleari
Raccolta delle cellule
● Digerire le cellule dalla fiasca e raccoglierle in microprovette.
● Centrifugare a 300 g per 5 min a 4°C e smaltire il surnatante.
● Lavare la precipitazione cellulare 3 volte con tampone PBS per garantire la rimozione delle impurità residue.
Preparazione per la lisi cellulare
● Dopo la centrifugazione, smaltire il surnatante. Aggiungere 5 volte il volume di tampone A preraffreddato (ad esempio, aggiungere 100 μL di tampone A per ogni 20 μL di precipitazione cellulare), pipettare per mescolare e sospendere completamente le cellule.
● Mettere la sospensione cellulare su ghiaccio per 10 min, quindi centrifugare a 300 g per 5 min a 4°C. Rilascio del nucleo
● Dopo la centrifugazione, scartare il surnatante, aggiungere di nuovo 25 volte il volume di Buffer A preraffreddato e pipettare delicatamente per risospendere le cellule.
● Trasferire la sospensione cellulare in un omogeneizzatore Dounce per l'omogeneizzazione.
Monitoraggio dell'omogeneizzazione
● Durante il processo di omogeneizzazione, prendere una piccola quantità di sospensione cellulare e mescolarla con un volume uguale di colorante blu Trypan allo 0,4%.
● Osservare la rottura della membrana cellulare al microscopio:
● Se la maggior parte delle cellule è colorata di blu, significa che la membrana cellulare è stata rotta e interrompere l'omogeneizzazione.
● Se non è completamente rotta, continuare l'omogeneizzazione.
Separazione del nucleo cellulare e del citoplasma
● Quando la maggior parte delle cellule è rotta, trasferire la sospensione cellulare in una provetta Eppendorf e centrifugare a 25.000 g per 20 min a 4 °C. Risultati della centrifugazione:
●Il supernatante contiene componenti citoplasmatici.
●Il precipitato è il nucleo cellulare, che contiene proteine nucleari.
Estrazione delle proteine nucleari
●Raccogliere il precipitato dopo la centrifugazione, aggiungere 1 volume di Buffer B preraffreddato e soffiare delicatamente per risospendere il precipitato.
●Trasferire la sospensione in un omogeneizzatore per tessuti pulito e omogeneizzare 30 volte per garantire che la proteina nucleare venga completamente rilasciata.
Dissoluzione ed estrazione delle proteine
●Trasferire la sospensione omogeneizzata in una provetta Eppendorf e incubarla in uno shaker a bassa velocità su ghiaccio per 45 minuti per garantire che la proteina nucleare venga completamente disciolta.
●Centrifugare a 25.000 g per 30 minuti a 4 °C e raccogliere il supernatante, che è la proteina nucleare purificata.
Fasi di estrazione delle proteine nucleari (metodo del kit)
Preparazione
Preparazione del reagente
●Equilibrare il kit di estrazione delle proteine nucleari a temperatura ambiente.
●Aggiungere PMSF al reagente di estrazione delle proteine plasmatiche e al reagente di estrazione delle proteine nucleari fino a una concentrazione finale di 1 mM.
●Se il campione contiene cisteina, aggiungere DTT a entrambi i reagenti fino a una concentrazione finale di 0,5 mM.
Raccolta e lavaggio delle cellule
●Digerire le cellule dalla parete della beuta e raccoglierle in una provetta Eppendorf.
●Centrifugare a 300 g per 5 min a 4°C e scartare il surnatante.
●Lavare le cellule 1-2 volte con tampone PBS per rimuovere le impurità residue.
Lisi cellulare
● Centrifugare a 300 g per 10 min a 4 °C e scartare il surnatante.
● Aggiungere 5 volumi di reagente di estrazione delle proteine plasmatiche (ad esempio, aggiungere 100 μL per 20 μL di pellet cellulare) e mescolare delicatamente capovolgendo per garantire che le cellule siano sospese uniformemente. Fare attenzione a non agitare con il vortex per prevenire un'eccessiva rottura delle cellule.
Reazione di lisi
● Mettere la sospensione cellulare su ghiaccio per 20 min per lisare completamente le cellule.
Separazione delle proteine citoplasmatiche
● Centrifugare a 250 g per 20 min a 4 °C e scartare il surnatante.
● Aggiungere 2 volumi di reagente di estrazione delle proteine plasmatiche preraffreddato al pellet cellulare e mescolare delicatamente.
Rilascio nucleare
● Utilizzare una siringa con un ago da 0,14 mm per soffiare delicatamente 5 volte per lisare completamente il pellet cellulare. ● Centrifugare a 10.000 g per 30 min a 4°C, raccogliere il surnatante (proteina citoplasmatica) e scartare il pellet (proteina nucleare).
Estrazione della proteina nucleare
● Aggiungere 50-100 μL di reagente di estrazione della proteina nucleare al precipitato della proteina nucleare e soffiare delicatamente 5 volte con una siringa ad ago da 0,14 mm di diametro per assicurarsi che il precipitato sia completamente sospeso.
● Collocare la sospensione su un agitatore a bassa velocità su ghiaccio e incubare per 45 minuti per favorire la dissoluzione della proteina nucleare.
Separazione delle nucleoproteine
● Centrifugare a 16.000 g per 5 minuti a 4°C e raccogliere il surnatante, che è la proteina nucleare cellulare estratta.
Fasi di estrazione delle proteine nucleari tissutali
Preparazione del campione di tessuto
●Pesare il campione di tessuto da estrarre.
●Tagliare il tessuto in piccoli pezzi il più possibile per aumentare l'efficienza di omogeneizzazione.
Omogeneizzazione del tessuto
●Aggiungere 300-500 μL di PBS per ogni 50 mg di tessuto.
●Utilizzare un omogeneizzatore per omogeneizzare completamente in condizioni di bagno di ghiaccio per garantire che il tessuto sia completamente dissociato e formi una sospensione uniforme.
Centrifugazione e raccolta del precipitato
●Centrifugare a 500 g per 3 min a 4 °C e scartare il surnatante nella sospensione di tessuto.
●Raccogliere il precipitato, che contiene cellule e organelli.
Estrazione nucleare cellulare
●Aggiungere il precipitato raccolto a 200 μL di soluzione di estrazione delle proteine plasmatiche.
●Continuare a estrarre le proteine nucleari cellulari secondo le fasi di centrifugazione sopra indicate.
La selezione di un metodo adatto dovrebbe essere determinata in base agli obiettivi sperimentali, alle dimensioni del campione e all'attrezzatura sperimentale. Nelle applicazioni pratiche, i ricercatori possono selezionare in modo flessibile un metodo di estrazione delle proteine nucleari adatto in base alle proprie esigenze e alle caratteristiche specifiche del campione. Indipendentemente dal metodo scelto, garantire l'accuratezza dell'operazione e le condizioni di bassa temperatura è la chiave per ottenere proteine nucleari di alta qualità.
Spero che questo articolo possa fornire preziosi riferimenti per tutti, contribuire a ottimizzare il processo di estrazione delle proteine nucleari e migliorare l'affidabilità e la ripetibilità dell'esperimento.
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